1.定性分析（显微镜）：

图1. Mitochondrial Membrane Potential and Apoptosis Assay Kits荧光镜检拍照

（1）阴性组：K562正常细胞，进行NucTrack™ 488 Caspase-3/7、BF™ 647-Annexin V、EthD Gold、MitoBright™ 630、Hoechst 33342同时共染后合成画Merge；

（2）阳性组：诱导凋亡处理后的K562细胞，进行NucTrack™ 488 Caspase-3/7、BF™ 647-Annexin V、EthD Gold、MitoBright™ 630、Hoechst 33342同时共染后合成画Merge。

结果判读：

正常细胞：线粒体被MitoBright™ 630染成红色，Hoechst 33342将细胞核染成蓝色；凋亡细胞：Caspase-3/7活性明显增加（绿色荧光亮度、细胞个数显著增强），EthD Gold信号明显增加（黄色荧光亮度、细胞个数明显增加），线粒体染色明显降低（红色荧光强度、细胞个数显著降低），Hoechst 33342将细胞核染成蓝色。

结果表明，K562细胞经过凋亡诱导后，线粒体膜电位下降乃至消失，Caspase-3/7活性明显增加，表明药物激活了细胞的凋亡程序，导致细胞凋亡，表明该药物促进了细胞的凋亡。

2.定量分析（流式细胞仪）：

图2. Mitochondrial Membrane Potential and Apoptosis Assay Kits流式分析

以FSC-SSC构建散点图，来确定细胞群，并记录10000个事件，以Caspase为X轴，EthD Gold为Y轴，将完整细胞群分为健康细胞（左下）、早期凋亡细胞（右下）、晚期凋亡细胞（右上）；并对单个细胞群（按照象限）进行线粒体膜电位分析，以Hoechst 33342为X轴，MitoBright™ 630为Y轴检测线粒体膜电位变化情况。

结果判读：以阳性组（2 h）为例（凋亡药物处理2 h）：图B可以区分出健康细胞（左下）、早期凋亡细胞（右下）、晚期凋亡细胞（右上），图B1表明健康细胞中有线粒体膜电位细胞的占比；图B2表明早期凋亡细胞中有线粒体膜电位细胞的占比，图B3表明晚期凋亡细胞中有线粒体膜电位细胞的占比。

结果判读1：计算三个细胞分群中有线粒体膜电位的细胞占总细胞的个数。

例：（以凋亡诱导2 h为例）

计算早期凋亡细胞有膜电位的细胞个数：10000×69.67%×30.64%=2134

结果判读2：细胞经过凋亡诱导后，随着凋亡诱导时间的增加线粒体膜电位下降，Caspase信号与EthD Gold信号增加。表明该药物促进了细胞的凋亡。

注：实际检测结果可能因检测仪器、操作条件、细胞类型等差异产生不同，本示例仅提供参考。

注：此占比并非是占总细胞数（10000个细胞）的占比，而是分析图B中三个不同分群中，有线粒体膜电位的细胞分别占各自群体的比例。 

注：实际检测结果可能因检测仪器、操作条件等差异产生不同，本示例仅提供参考。